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目前,市场上常见的多为凤仙花的非洲远亲,即新几内亚凤仙和非洲凤仙 [4].关于凤仙花属植物的研究,我国主要集中在植物分类学研究、种质资源调查、花粉形态学研究,栽培技术方面的研究较少,即使有也主要以凤仙花为材料[6~7].
作为一种尚未开发利用的野生花卉,菱叶凤仙在极低的养护条件下,就能获得令人满意的观赏效果,其绿期长、覆盖度高、长势均匀、形态美观,花朵明论文范文、绚丽多姿,可用来点缀草坪,亦可丰富林下景观.此外,因菱叶凤仙花具匍匐型生长的特点,还可将其开发为悬垂盆栽类,作为室内观赏植物.为了实现菱叶凤仙花的厂房化生产,有必要对种子生物学特性进行研究,从种子开始引种栽培,对该种植物的生长发育也可进行深刻、全面地了解.因此,该试验将以此为切入点,研究不同浸种温度、不同浸种时间对菱叶凤仙花种子萌发的影响.
植物成花过程中的花器官形成,不仅受环境因子的影响,还受自身营养物质的吸收和内源激素的影响[8],相关学说主要有春花作用学说、光周期学说、激素调控学说、碳氮比学说[9~10].研究表明：植物生长调节剂对许多植物花芽的分化具有显著的调控作用[11].本试验将以此为切入点,研究不同浓度赤霉素对菱叶凤仙花开花的影响,为分析其耐阴性和最适生长环境,本试验还将研究其光合特性.
1.试验时间
试验于 2012年 3月下旬 ~11月中旬,分别在成都市温江区江安河万春镇段和四川农业大学成都校区进行.
2.材料
供试菱叶凤仙花种子为 2011年 11月下旬 ~12月初,采
集于成都市温江区江安河万春镇段,选取发育好、粒大饱满者、自然阴干后,装在牛皮纸袋中于室温贮藏.
3.试验方法
3 1不同浸种时间、浸种温度对菱叶凤仙花种子萌发的影响
3 1.1种子的清洗和消毒：将供试菱叶凤仙花种子用
0.2%的高锰酸钾溶液浸泡 2h后,在流水下清洗干净[12],培养皿进行高温灭菌消毒.
3 1.2试验处理：王少平在凤仙花种子发芽特性研究中发
现,以 30℃浸种温度处理种子最好[7],故本试验将选取的菱叶凤仙花种子用纱布包好后,分别浸入 20℃、30℃、40℃水中,分别浸泡 4h、8h后,取出放入铺有滤纸的培养皿中,加蒸馏水保湿,置于 20℃和 30℃的恒温箱中进行种子萌发试验.每组处理选取种子 50粒,选粒大饱满者.
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1.3观测指标：该试验主要观测不同处理下的种子萌发情况,进而分析其发芽率.发芽标准为芽萌发长出白嫩顶尖,长度为种子长度的一半[7],以连续 5d内没有种子萌发时标志为发芽结束.
注：发芽率 等于发芽的种子总数 /供试种子总数×100%[13]
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2.野外菱叶凤仙花的物候期观测
在野外（成都市温江区江安河万春镇段）,自菱叶凤仙花发芽之日起,分别编号挂牌做标记,固定观测 50株,在物候期转换期每隔 7d观察 1次,重点记录展叶期、始花期、盛花期、终花期.
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3.不同浓度赤霉素处理对菱叶凤仙花开花的影响
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3.1调配基质并消毒：试验采用盆栽的形式,栽培基质为 75%园土＋25%营养腐殖土.基质于晴天用浓度 2%~3%的硫酸亚铁水溶液消毒,用量为 9g/m2[12].
3 3.2培育菱叶凤仙花幼苗：分析上述种子萌发试验中的
最佳浸种温度,将种子消毒后进行浸种处理,播种于 200孔
穴盘中,每孔 2粒种子.穴盘基质为已消毒的 75%园土＋ 25%营养腐殖土,播种后,在表层覆盖 1层薄的细沙,将穴盘放在光照、空气充足的地方,并定期浇水,保持种子萌发所需水分.
3.3.3上盆后用赤霉素处理：待穴盘苗进入幼苗期,即长出 4~5片真叶后[14],精选 100株长势一致的穴盘苗移植入直径 1cm的黑色育苗袋中.每 20株 1个处理,共设 5个处理,即清水对照、20mg/L喷施、50mg/L喷施、100mg/L喷施、 200mg/L喷施,配制各溶液时,先用少量 95%无水乙醇将赤霉素溶解后,再用蒸馏水稀释到相应浓度.待幼苗平均株高为 10cm时开始全株喷施,每隔 10d喷施 1次直到进入始花期,在此期间进行正常的养护管理.
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3.4观测指标：该试验主要观测菱叶凤仙花在不同浓度赤霉素处理下的开花物候,记录并分析始花期、盛花期、终花期、花期持续时间等数据.其中花期以 5%的个体开花时视为始花期；以 50%的个体达到开花高峰时视为盛花期；95%的个体开花结束时视为终花期[15].
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4.叶绿素含量测定和光合特性分析
试验于 2012年 7月 9日进行叶绿素含量的测定,方法如下[16]：分别在野外菱叶凤仙大量聚集的 2个区域,随机选取长势良好且一致的植株,每个区域 4个重复.在自上而下的第 3~5片发育完全的功能叶中选取 0.5g叶片,将称取的约
0.5g叶片剪碎后,采用丙酮——乙醇混合液浸提获取叶绿素.其方法是,将已剪碎的待测叶片装入具塞刻度试管中,加入现配的丙酮 -乙醇混合液（1∶1,V/V）10mL,使叶片完全浸入液体中,加盖,放入暗处.当叶片完全变白时,倾出浸提液后备用.取上述方法获得的浸提液 1mL稀释至 10mL,摇匀,以丙酮——乙醇混合液（1∶1,V/V）为参比液,在分光光度计 663nm、645nm下测其光密度,按下列修正后的 Arnon公式计算叶绿素 a、叶绿素 b的含量,并用 LSD法多重比较进行差异显著性分析.
注：Chla含量（mg/g）等于(12.7OD663-2.69OD645)×0.2
Chlb含量（mg/g）等于(22.9OD645-4.68OD663)×0.2
于 2012年 7月 3日 9 ∶00~12 ∶00进行,采用美国 LI-COR公司生产的 LI-6400便携式光合测定仪,选取洁净的叶片 4片进行测定.将 PAR（光合有效辐射）分别设为 0、 50、80、100、150、200、400、800、1200、1600和 2000μmol·m-2· s-1进行光响应曲线的测定.试验数据经 Photosyn Assistant分析后,Excel作图.
4.结果与分析
4 1不同浸种时间、浸种温度对菱叶凤仙花种子萌发的影响
种子萌发试验于 4月 20日开始进行,各处理开始萌发的时间集中于 4月 26日,其中 40℃浸种 8h,30℃处理的发
.发萌始开日29月 4,于晚最芽
由图 1可知,浸种温度 30℃浸种 8h,30℃萌发的条件下菱叶凤仙花种子发芽率最高,为 78%.其次,浸种温度 20℃浸种 8h,20℃萌发、浸种温度 30℃浸种 8h,20℃萌发,均为 68%,发芽率最低的为浸种温度 40℃浸种 8h,30℃萌发.综合分析,浸种温度为 30℃时种子萌发率最高,平均为 67.5%；浸种温度为 40℃时种子萌发率最低,平均为 37%.
由图 2可知,当在 20℃浸种 20℃萌发、30℃浸种 20℃萌发、30℃浸种 30℃萌发下,种子发芽率随浸种时间延长而提高.但在 40℃浸 20℃萌发、40℃浸种 30℃萌发的条件下,种子萌发率随浸种时间延长而降低,其中表现最明显的为 40℃浸种 30℃萌发,当浸种时间由 4h延长到 8h后,种子发芽率由 42%降低到 20%,降低了 52%.
综上分析：菱叶凤仙花种子的最佳浸种温度为 30℃,最佳浸种时间由浸种温度和萌发温度决定,在浸种温度为 20℃和 30℃的情况下,种子发芽率与浸种时间呈正相关；在浸种温度为 40℃的情况下则呈负相关.在此试验条件设定下, 30℃浸种 8h,30℃萌发的种子发芽率最高,为 78%.
图 1不同浸种温度对菱叶凤仙花种子萌发的影响
图 2不同浸种时间对菱叶凤仙花种子萌发的影响
4 2野外菱叶凤仙花物候期观测
由表 1可以看出,2012年该地区的野生菱叶凤仙花于 2月 12日开始萌芽,2月中旬开始展叶,8月 11日前后出现花蕾,9月 8日前后进入初花期,10~11月为盛花期,末花期为 11月中旬,花期近 3个月.另外,9月开始结实,果期可持续到 12月底（2011年采集种子时观测）.
表 1野外菱叶凤仙花物候期统计表单位：（月 /日）
萌芽期展叶期现蕾期初花期盛花期终花期
2/12~2/16 2/18~2/25 8/11~11/9 9/8~9/29 10/13~11/3 11/10~11/18
4 3不同浓度赤霉素处理对菱叶凤仙花开花的影响
由表 2可知,不同浓度的赤霉素处理均可使菱叶凤仙花花期提前,且在一定的浓度范围内,提前开花的天数与赤霉素的浓度呈正相关.其中,100mg/L的赤霉素处理对开花的影响最显著,提前了 12.4d.
由表 3可知,赤霉素处理可以缩短花期持续时间,花期的长短与赤霉素的浓度呈负相关.在该梯度下以 100mg/L的处理最为明显,与 CK组相比花期持续时间缩短了 20.84%.
表 2不同浓度的赤霉素喷施对菱叶凤仙花开花日期的影响
赤霉素浓度 20mg/L 50mg/L 100mg/L 200mg/L
花期影响提前 5.1d提前 8.2d提前 12.4d提前 7.6d
表 3不同浓度的赤霉素喷施对菱叶凤仙花花期持续时间的影响
赤霉素浓度 CK 20mg/L 50mg/L100mg/L 200mg/L
花期持续时间 83d 80d 77.8d 65.7d 69.6d
4 4菱叶凤仙花的光合特性分析
4 4.1菱叶凤仙的光响应特点.菱叶凤仙的光呼吸速率为
-1.50,表观量子效率（AQE）为 0.0703,最大净光合速率 Amax为 24.6umoLCO2 ·m-2·s-1,光补偿点（LCP）为 19.1
表 4
叶绿素含量测定
μmoL·m-2·s-1.由图 3可知,菱叶凤仙在光照强度
项目
chla(mg/g)
chlb(mg/g)
chl总含量（mg/g）
chla/b
（PAR）低于 700μmoL·m-2·s-1时,净光合速率（Pn）随
地点 1
1 7999±0.106aA
0.6939±0.0437aA
2 4939±0.1494aA
2 3985±0.0935bA
光照强度增加而提高,其中在 0~700μmoL·m-2·s-1
地点 2
1 7488±0.0639aA
0.6496±0.0297aA
2 5962±0.0243aA
2 6952±0.0238aA
区间内 Pn增加较快,此后逐渐减慢,超过
注：同一列中大小写字母分别表示 1%或 5%水平下差异的显著性,具有相同字
700μmoL.m-2·s-1,Pn随光强增加逐渐趋于平缓的原因可能是因为光合有效辐射强度过大,造成光合速率下降或者引起光抑制而导致.随着光照强度的增大,净光合速率迅速上升,当其达到最大净,光合速率 24.6 μmoLCO2 · m-2·s-1时的光强值便是光饱和点,由此推断菱叶凤仙的光饱和点应在 700μmoL·m-2·s-1左右.
在低光合有效辐射 PAR为 0~200umoL·m-2·s-1时,用直线拟合的方法得到回归方程为：y等于0.064x-1.262（R2等于0.989）
由该方程得到的表观量子效率（AQE）为 0.064,LCP为
1.9.7 umoL·m-2·s-1,见图 4.
图 3菱叶凤仙花光响应曲线图
图 4拟合曲线图
4 4.2菱叶凤仙叶绿素含量的分析.由表 4可知,在这 2
个菱叶凤仙主要聚居地,除叶绿素 a/b在 5%水平下具显著性差异外,叶绿素 a（chla）、叶绿素 b（chlb）、叶绿素总量（chl）c均无显著性差异.但菱叶凤仙的叶绿素含量较高,叶绿素 a/b值低于理论值 3∶1.研究表明,当植物处于遮荫环境时,往往表现为叶绿素含量的增加,特别是叶绿素 b的含量增加,叶绿素 a/b值随光量子密度降低而减小,对远红外光的吸收能力增强,使植物体本身保持较高的光和活性,以提高植物对弱光和散射光的利用能力,保证植物本身同化产物的积累[19].因此,推断菱叶凤仙对遮因此以环境有一定适应潜在能力,但具体适应遮荫度还有待进一步研究.
5.讨论
温度通过影响种子内酶的合成、呼吸作用及许多其它的生化反应控制种子的吸水率,进而影响种子的发芽率与发芽势.若要使种子能正常萌发,则必须提供萌发过程中适宜的温度条件与水分条件.适当的高温可以提高种皮透性,促进气体交换和种子萌发代谢.在本试验设置的温度梯度中,菱叶凤仙种子的浸种温度不适宜超过 40℃.此外,适当延长浸
母的数值间差异不显著
种时间,种子吸水更充分,促进种子内部的新陈代谢,能够为种子萌发做好充分准备.当然种子与水分环境接触时间过久,也会对种子的呼吸和代谢作用产生抑制,菱叶凤仙的具体浸种时间限制有待进一步研究.
研究表明,适宜浓度的赤霉素处理植物,可以促使细胞壁里的钙离子进入细胞质中,使细胞壁的伸展性增强,生长速度加快,并促使提前开花.该试验也证明了这一点,且以 100mg/L的处理对其开花的影响最显著,花期提前了 12.4d.野外和栽培 2种状态下的菱叶凤仙花大致在 10月 13日 ~10月 17日进入盛花期,通过 100mg/L的赤霉素处理,可将盛花期调整至国庆节前后,大大提升了国庆假日的观赏效果.
植物的光饱和点和光补偿点能够反映植物对光照条件的要求,是判断植物耐阴性的一个重要指标[17].光补偿点低意味着植物在较低的光强下就能开始有机物质的积累,说明植物可利用弱光的能力强,有利于有机物质的积累,植物的耐阴性强[17].阳生植物光补偿点一般在 9~18μmoL/m-2·s-1,光饱和点在 360~450μmoL/m-2·s-1或者更高[18].
菱叶凤仙的光补偿点为 19.1μmoL/m-2·s-1,由此可知,菱叶凤仙属于喜光植物,而低光饱和点 700μmoL·m-2·s-1及较大的表观量子效率（AQE）0.0703,都说明菱叶凤仙利用弱光的能力强,具备良好的耐阴性.在夏季的高强光下,通过遮荫和洒水降低小环境温度,提高湿度,可以提高光合效率.菱叶凤仙花较高的叶绿素含量和叶绿素中叶绿素 b的比例增加,也说明其对弱光和散射光的利用能力强.
综上所述,菱叶凤仙花整体发芽率偏低,但在浸种温度
3.0℃浸种 8h,30℃萌发的条件下发芽率可以提高到 78%.通
过对野外菱叶凤仙花进行物候期观测可知,其花期为 9月初 ~11月中旬,盛花期集中在 10月,通过喷施不同浓度赤霉素处理可以适当提前花期,其中以 100mg/L的赤霉素处理对开花的影响最显著,提前了 12.4d.通过对其进行光合特性分析,菱叶凤仙花的光补偿点为 19.7μmol·m-2·s-1,光饱和点为 700μmol·m-2·s-1,表观量子效率为 0.0703,对弱光的利用能力强,具备较高的耐阴性.
总结：该文是关于凤仙花论文范文，为你的论文写作提供相关论文资料参考。
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