当前位置:论文写作 > 论文怎么写 > 文章内容

宠物狗和抗药性论文写作资料范文 宠物狗和抗药性类有关硕士毕业论文范文2500字有关写作资料

主题:宠物狗和抗药性 下载地址:论文doc下载 原创作者:原创作者未知 评分:9.0分 更新时间: 2024-03-08

宠物狗和抗药性论文范文

《宠物犬肠道可培养细菌耐药性种类与其分布》

本文是宠物狗和抗药性相关硕士毕业论文范文与宠物犬方面研究生毕业论文范文.

摘 要:為探明宠物犬肠道微生物携带抗生素耐药性的流行病学及阐释饲养动物中微生物抗性与人病原微生物抗性基因的关系.采用细菌分离培养鉴定以及影印平板技术对宠物犬肠道可培养肠杆菌携带的耐药性及其种类、多样性和生态分布进行了调查.结果表明:宠物犬肠道可培养细菌具有较高的耐药性比例和多重耐药性.其中大肠杆菌对氨苄西林、磺胺类药物、氯霉素、链霉素和四环素等较早使用的药物耐药率较高,反而对进入临床时间较短的头孢菌素类药物相对较敏感.在调查的细菌中几乎所有的细菌至少有1种抗生素抗性,可分离的肠道细菌中一半以上具有5种以上的抗生素抗性.综上所述,肠道微生物抗性的产生与抗生素的使用时间紧密相关,并且宠物犬肠道可培养细菌的抗性广泛分布,表明宠物很可能成为耐药性基因在环境和人类病原细菌间传播的潜在途径.

关键词:宠物犬;抗生素;肠道可培养细菌;耐药性

中图分类号:S858.292文献标志码:A文章编号:0253-2301(2020)04-0009-08

DOI: 10.13651/j.cnki.fjnykj.2020.04.002

Types and Distribution of the Drug Resistance of the Culturable Bacteriain the Intestinal Tract of Pet Dogs

Hafeez ul Haq, ZHANG Qinyi, LI Ye, CHEN Mingbo, XUE Haizhao, LUO Chengsong, FANG Xing,LIU Pingping, JIANG Ningcheng, ZHANG Ting, XIONG Juan, TIAN Baoyu*

(Engineering Research Center of Industrial Microbiology of Ministry of Education, Fujian Normal

University/College of Life Sciences, Fujian Normal University, Fuzhou, Fujian 350108, China)

Abstract: In order to explore the epidemiology of antibiotics resistance carried by pet dogs′ intestinal microorganis and explain the relationship between the microbial resistance in raising animals and the resistance genes of human pathogenic microorgani, the antibiotic resistance carried by the culturable enterobacter in the intestinal tract of pet dogs was investigated, as well as the species, diversity and ecological distribution, by using the bacterial culture, isolation and identification and the replica plating technology. The results showed that the culturable bacteria in the intestinal tract of pet dogs had a high proportion of drug resistance and multidrug resistance. Among which, Escherichia coli had a higher drug resistance rate to the drugs that were used earlier such as ampicillin, sulfonamides, chloramphenicol, streptomycin and tetracycline, while was more sensitive to cephalosporins with a short clinical time. Almost all of the bacteria surveyed had at least one antibiotic resistance, and more than half of the isolatable intestinal bacteria had at least five antibiotic resistance. In summary, the occurrence of intestinal microbial resistance was closely related to the usage time of antibiotics, and the wide distribution of the resistance of the culturable bacteria in the intestinal tract of pet dogs indicated that pets were likely to be the potential route for the tranission of resistance genes between the environment and human pathogenic bacteria.

Key words: Pet dogs; Antibiotics; Culturable intestinal bacteria; Drug resistance

自20世纪50年代Moore和Jukes等报道在畜禽和猪饲料中添加抗生素可以促进动物生长,提高生产效率以来,抗生素饲料生长促进剂的推广和使用极大地促进了畜牧业的发展,使规模化工厂化养殖成为可能.抗生素的研发已经不只是为了治疗人畜感染,越来越多的抗生素被用作饲料添加剂[1].然而随着越来越多的抗生素在医疗保健及畜牧业生产上的广泛应用,抗生素使用导致的细菌耐药性、禽畜产品药物残留等危害日益严重.一方面,新型抗生素研发和产生的速度总是跟不上细菌变异耐药的速度.无论是临床医疗还是畜牧业,都将面临细菌耐药性越来越强的问题.青霉素于1940年首次应用于临床,14年后(1954年)金葡萄球菌被证实对其产生了耐药;同样耐甲氧西林金葡萄球菌出现于甲氧西林上市8年后的1968年;而庆大霉素于1964年投入使用,4年后亦出现了耐庆大霉素绿脓杆菌[2].另一方面,抗生素进入到动物体内之后不能被完全吸收,有60%~90%的药物随动物粪便排出体外.这些残余的抗生素会随着动物粪便施肥过程释放到环境中,并最终成为抗性细菌和多重抗性细菌的选择因子和多重抗性因子.随着抗生素的不断研发和使用,各种耐药菌伴随而来,于是出现了“超级细菌”.所谓“超级细菌”并不是一种细菌的名称,而是一类对绝大多数抗生素都有强耐药性的细菌的统称.它们能够编码新德里金属β内酰胺酶(New Delhi metallobetalactamase,简称NDM1),这是一种能催化水解多种β内酰胺类抗生素(包括碳青霉烯类广谱抗生素等抗生素)的酶[3].针对NDM1,世界卫生组织(WHO)曾做出评估:虽然多重耐药细菌并不属于一个新问题,并且今后也还会继续出现,但NDM1细菌的出现,表明细菌耐药性已成为一个日益严重的全球性公共卫生问题.

目前,在所有消费的抗生素中,有50%用于畜牧业和水产养殖业,其中将近一半用于动物生长促进剂[4].现在我国大约有17种抗生素被用作添加剂进入饲料中[5].此类滥用抗生素的手段,是导致越来越多耐药性细菌甚至超级细菌出现的一大原因.并且有关数据表明,近10年来,禽畜养殖中使用的抗生素剂量和种类一直在增加.禽畜粪肥也成为环境中抗性细菌和抗生素混合存在的一个重要的库,由于其在农业土壤肥力保持中的重要作用,因而很大程度上提高了抗性基因和抗性细菌在土壤中的选择和传播过程[6].由此可见,研究动物源性耐药菌的产生不仅仅对动物生长具有重要意义,对人类的健康更具有重要作用.近年来,随着中国经济的快速增长和人民生活水平的提高,宠物行业得以高速发展,宠物越来越受到人们的青睐,家庭拥有的宠物总量以几何倍数增长.2013年中国宠物数量已增至1.2亿只,随之而来的宠物食品市场快速发展,宠物养殖正逐渐向规模化和专业化方向发展[7].与宠物数量快速增加所带来的对公共安全危害和寄生虫病传播的广泛关注不同,由于宠物和家庭成员的亲密接触,因此存在具有对抗生素抗性的微生物转移至人类身上的可能.基于目前抗生素滥用情况的出现,本研究应用细菌分离培养鉴定以及影印平板技术,对目前市场上主要的宠物犬肠道内可培养微生物的抗生素抗性及其种类、多样性和生态分布进行系统调查,以期探明宠物犬肠道微生物携带抗生素耐药性的流行病学及阐释饲养动物中微生物抗性与人类病原微生物抗性基因的关系等,为合理利用抗生素调节环境微生物的种类、数量以及抗生素抗性的分布奠定基础.

1材料与方法

1.1试验材料

宠物犬的新鲜粪便收集于福州市花鸟市场宠物市场.采集新鲜粪便(3~5份)分别用密封袋密封,并用记号笔标记采集地点、采集日期、采集人,放入4℃的冰箱中备用.采集的样品在24 h内处理.

1.2培养基

1.2.1液体培养基LB液体培养基,胰蛋白胨10 g,酵母浸出粉5 g, NaCl 10 g, pH值自然,以蒸馏水定容至1 L, 1×105 Pa灭菌20 min备用.

1.2.2固体培养基LB固体培养基,胰蛋白胨10 g,酵母浸出粉5 g, NaCl 10 g,琼脂粉15 g,pH值自然,以蒸馏水定容至1 L, 1×105 Pa灭菌20 min备用.

1.3抗生素储备液的制备

参照文献[9]准备10类抗生素制成储备液,过滤除菌后于-20℃冰箱保存备用.

1.3试验方法

1.3.1样品处理将收集的新鲜宠物犬粪便称取5 g,放入带有3~5粒玻璃珠并盛有25 mL无菌生理盐水的50 mL离心管中,用涡旋搅拌仪旋转振荡使粪便与无菌生理盐水充分混匀.静置5 min后分别移取1.0 mL粪便上清液梯度稀释至10-4,分别吸取100 uL涂布于LB固体平板培养基上,每份粪便样品至少涂布5个LB平板,37℃培养24 h,观察菌落形态差异并计数.

1.3.2肠道肠杆菌细菌的分离纯化、计数和初步鉴定统计稀释平板上细菌克隆数目,然后根据平板上细菌克隆的形态、颜色和大小,挑取圆形边缘整齐、表面光滑、半透明的菌落进行单克隆划线.从划线平板上选取单克隆再次划线,经过两次纯化,保证得到单一纯化的菌株.为了确认分离的细菌菌株是否为肠杆菌,纯化菌株同时被接种于伊红美蓝乳糖培养基上.培养后,分离的细菌菌株在伊红美蓝乳糖培养基上呈现深紫色菌落被初步认定為肠杆菌菌株,分离纯化和初步确认的肠杆菌菌株按20%比例加入甘油,置-20℃冰箱保种.为了进一步验证,从保存菌种中随机挑取5~8株接种到LB液体培养基,37℃、220 r·min-1培养24 h,用于基因组DNA的提取和分子鉴定.

1.3.3肠道可培养肠杆菌16S rRNA的PCR扩增、鉴定和系统进化树构建取动物肠道细菌的代表性菌株菌液1.5 mL,8000 r·min-1离心5 min,去上清,采取改良的酚氯仿法抽提肠道细菌基因组[8].以提取的细菌基因组为模板,采用通用引物27f/1492r进行PCR扩增细菌16S rRNA[9].PCR反应条件:95℃预变性5 min,94℃变性 45 s,56℃退火45 s,72℃延伸90 s,循环25次,72℃延伸10 min.扩增产物纯化后送至上海生工双向测序,获得的序列递交至RDP数据库确定其分类地位.同时在NCBI数据库中对各个序列进行BLAST,筛选同源序列.将分离纯化的可培养细菌的16S rRNA序列与下载的同源序列通过SeaView的ClustalX程序进行完全比对.编辑后用SeaView的tree程序构建PhyML系统进化树[10].

1.3.4菌落影印和抗生素抗性筛选[11] 取出保存的甘油菌液置于冰上,待完全融化后分别移取50 μL到对应的96孔板中,标记备用.将预先配制的固体LB培养基灭菌后冷却至60℃,按表1中所需工作浓度分别加入相应的抗生素,混匀后倒入方形平板,静置,待培养基完全凝固后,用带有96针的影印工具“印章”对准96孔板,轻蘸使其均匀带有相应的菌液;再把此印章在含有不同抗生素的培养基平板上轻轻印一下.印好10个含有不同抗生素的培养基平板后,将平板放在37℃的培养箱中培养12~16 h,观察培养基平板上菌落生长情况并计数.统计对每一种抗生素具有抗药性的微生物的数目,计算抗性微生物比例.计算公式:抗性微生物比例等于具有抗性菌株数/总测试菌株×100%.

2结果与分析

2.1宠物犬肠道可培养细菌的分离鉴定

从宠物犬粪便稀释平板上一共挑取200个左右同一类别细菌单菌落,细菌菌落形态、大小和颜色,以及镜检比较一致,染色结果均为革兰氏阴性.通过伊红美蓝乳糖培养基的进一步筛选,初步确认菌株为肠杆菌菌株.挑选8株宠物犬肠道来源的肠杆菌菌株,提取基因组后,以通用引物27f/1492r扩增细菌16S rRNA.测序后最终得到5条全长16S rRNA序列,序列经过对比并递交RDP进行分子鉴定,结果表明挑选的5株肠道细菌16S rRNA序列完全一致,确定挑取的5株来源于宠物犬肠道的革兰氏阴性细菌均为肠杆菌科埃希氏大肠杆菌(Escherichia coli).收集得到的5条全长16S rRNA序列dog_4、dog_6、dog_7、dog_L4、dog_L5,用于下一步的系统进化分析.

2.2宠物犬肠道可培养细菌16S rRNA系统发育树的构建

将得到的宠物肠道中的5株肠杆菌菌株16S rRNA序列分别在NCBI nt数据库进行比对,选取并下载同源序列以及肠杆菌科主要属典型菌株的16S rRNA序列,利用SeaView的ClustalX程序将目的序列与已知的肠杆菌科

16S rRNA序列进行比对,编辑后用SeaView的tree程序构建PhyML系统进化树(图1).细菌16S rRNA的系统发育分析表明,所分离的宠物犬肠道中可培养细菌聚于肠杆菌科的EcoliShigella分支,由此可以看出这些宠物犬来源的肠道细菌菌株序列高度同源,彼此间的亲缘关系很近.

2.3宠物犬肠道可培养细菌抗生素抗性或敏感性分析

2.3.1宠物犬肠道可培养细菌的耐药性及抗性细菌在肠道微生物中的比例在确定分离菌株为大肠杆菌菌株的基础上,对其中的192株分离纯化的宠物犬肠道大肠杆菌菌株抗生素耐药性进行分析,结果表明宠物犬肠道大肠杆菌对氨苄青霉素(AMP)的抗性最为普遍,耐药性比例达到了90%.其次对萘啶酮酸(NaA)、盐酸四环素(TC)、盐酸克林霉素(DA)、磺胺嘧啶(SD)耐药性比例也均在80%以上.在耐药性比例较高的5种抗生素中,氨苄青霉素、四环素和磺胺类药物都属于应用范围广,使用时间比较长的临床常备抗生素,较高的抗性微生物比例说明该类抗生素或者抗性微生物在家养犬或者环境中广泛存在.宠物犬肠道微生物对其余几种抗生素的抗性比例相对较低,除红霉素(Ery)抗性比例达到42.5%外,其余均小于20%,其中对硫酸链霉素的抗性比例仅为5.8%,说明硫酸链霉素对所分离出的大肠杆菌菌株具有很好的抑制或杀害作用.

2.3.2宠物犬肠道可培养微生物中的多重抗性细菌根据镜检和分子鉴定结果,从宠物犬粪便分离培养得到的菌株均为大肠杆菌.测试的192株细菌中97%以上菌株具有至少1种以上的抗生素抗性,其中有60.3%的细菌具有5种或6种抗生素抗性,比例最多,说明被检测细菌具有较广泛的抗生素抗性,并且这些抗性集中在几种抗生素上,表明这些耐药性在宠物犬肠道微生物中已经固化,形成了稳定的菌群结构和遗传结构.只有极少数不到3%的菌株没有表现出对任何抗生素具有抗性,说明了宠物犬肠道细菌普遍具有抗生素抗性.被检测的细菌中有6.4%对9种抗生素具有抗性,这表明在动物肠道内已有部分细菌进化出了非常广泛的抗性,这与临床中广泛存在超级细菌的结果是一致的.

2.4宠物犬肠道可培养细菌在环境中的分布及其抗性的潜在传播途径

通过收集和统计NCBI数据库中与鉴定的肠道可培养细菌具有高度序列同源性的细菌16S rRNA序列(序列同源性>99%),并对这些序列的来源与分布信息进行整理分析,发现在NCBI数据库中已经报道许多与分离的可培养细菌16S rRNA序列同源性大于99%的细菌.这些肠杆类细菌在环境中有非常广泛的分布.与被测的大肠杆菌16S rRNA有高度相似的细菌菌株在欧洲、亚洲和美洲如(美国、中国、英国、捷克、巴基斯坦等众多国家)都有报道,在猪、鼠、牛、鸡、麝香鹿以及被污染的河水等均大量存在,从陆地到海洋都有分布,可以说明这些细菌具有廣泛的地区分布;这些有高度相似的细菌菌株主要分布在土壤、水、根中,然而这些细菌在动物肠道内也能被检测出,说明了环境微生物与动物体内微生物之间的交叉感染.根据这些不同环境微生物之间的相互关联,形成了细菌在不同环境之间可能存在的关系链或关系网.

有研究表明,病原菌主要是在基因水平进行转移,这些病原菌会从含有抗性基因的同一或亲缘关系较近的细菌类群中获得抗性基因.其次,Sommer等[12]研究表明肠道可培养细菌(通常为兼性厌氧细菌或机会致病菌)以及环境中的同类细菌与病原菌含有的抗性基因具有高度的同源性,说明动物肠道中的可培养细菌可能会导致病原菌获得抗性基因.大肠杆菌能够适应各种环境,具有非常广泛的分布,而大量的人口流动及动物迁徙为细菌快速广泛地传播提供了有利条件.由此看来,动物肠杆菌类细菌很可能是人体病原菌获得抗性基因以及抗性基因传播的重要载体.因此,同一环境中不同来源的肠杆菌类互相传播,也可能是耐药性基因在不同微生物和人类病原菌之间相互传播的潜在途径[13].

3讨论与结论

宠物是一个潜在的细菌贮存库,其粪便、口腔、对人的生理性伤害(包括咬伤、抓伤)都是细菌传播的途径.人与宠物的亲密接触和共同的生活环境是细菌传播的条件.2006年美国有一病例报道,宠物主人被有抗菌药治疗史的犬咬后,发现感染了来自犬的多重耐药大肠杆菌和肠球[14].目前国内对食品动物抗菌药的使用有严格规定,但是对于宠物医疗方面,始终很少人去关注.实际上随着国内宠物行业的蓬勃发展,抗菌药的使用量非常大,加上小动物临床从业人员良莠不齐,或受经济利益驱使,无指征用药、滥用和不合理使用抗菌药现象很严重,由此导致的耐药问题可能比较突出[15].加上宠物活动范围相对较广,不同环境之间微生物抗性基因之间的相互传递,导致耐药谱越来越广.

本研究通过对宠物犬的肠道可培养细菌耐药性进行调查研究及统计分析,发现宠物犬肠道细菌对不同家族抗生素抗性具有明显差异.在测试的192株宠物犬肠道大肠杆菌中,超过80%菌株对氨苄青霉素钠、萘啶酮酸、盐酸四环素、盐酸克林霉素、磺胺嘧啶具有明显抗性;相反,只有不到20%测试菌株对氯霉素、硫酸链霉素、环丙沙星盐酸盐和头孢氨苄具有抗性.根据报道,国内兽医临床上最常用的抗菌药物有青霉素类、头孢菌素类、大环内酯类、氨基糖苷类、磺胺类、夫西地酸、四环素类、氯霉素类、林可胺类和氟喹诺酮类等.而其中氨苄青霉素、磺胺类药物、四环素等是最早应用在兽医临床并且使用时间也是最长[16].本研究对宠物犬肠道大肠杆菌耐药性的调查也反映了这一趋势,尽管有一定的差别,总的来说,测试的大肠杆菌对氨苄西林、磺胺类药物、氯霉素、链霉素和四环素等较早使用药物的耐药率较高,对头孢菌素类药物相对较敏感.这一结论与先前国外类似的工作结果是一致的[16].

在多重耐药菌方面,宠物动物中的细菌所携带的抗生素数目不尽相同,宠物犬肠道细菌中97%以上菌株具有至少一种以上的抗生素抗性.在宠物肠道微生物中有超过一半的测试细菌携带4~6种耐药性.宠物类肠道中耐药性微生物的比例以及这些微生物对不同抗生素抗性的差异可能与抗生素的使用密切相关.宠物肠道中出现多株多重耐药细菌的原因一方面可能是相关抗生素的广泛使用甚至滥用有关.Rantala等[16]对芬兰有过抗菌药治疗史的慢性皮肤病患犬与无用药史犬身上的葡萄球菌、肠杆菌和肠球菌耐药率进行比较,发现用药犬的葡萄球菌对磺胺(TMP)耐药率(57%)明显高于未用药犬的耐药率(25%),且多重耐药性更普遍(29%比9%);另一方面可能是因为抗生素抗性基因之间的连锁现象导致的共筛选.也就是说当多重耐药性共存于同一载体,比如转座子或者抗性质粒,当其中一种耐药性被环境中存在的抗生素筛选时,其他的耐药性也同时被筛选[17].Brenciani等[18]发现在125株携带大环内脂类抗生素抗性基因erm(B)的酿脓葡萄球菌中有117株也同時携带四环素抗性基因tet(M),并证明基因erm(B)和tet(M)是连锁的.Levy等[19]发现用添加亚治疗剂量土霉素饲料喂养的鸡排泄物中,大肠杆菌具有土霉素抗性,还具有链霉素、磺胺和氨苄西林抗性.

作为人的亲密伙伴,宠物通常被赋予了比经济价值更大的社会价值,因而在其感染性疾病的治疗中经常会使用更高级和更昂贵的抗生素,甚至是最新一代的人用抗生素药物.而在临床上,由于抗生素的不正确使用、滥用和误用,是导致这些动物肠道微生物耐药性产生的主要原因[20].而宠物和人之间的密切接触使得细菌更加容易通过宠物传播给人或者人传播给动物从而传播疾病.例如宠物犬和宠物猫携带的共患病病原菌可通过粪-口途径、皮肤外伤(犬咬伤或猫抓伤)或媒介昆虫传播给人,这种流行多为散发且难于统计.研究表明MRSA更多的是通过人传播给宠物,宠物并不感染发病而是作为贮存宿主,从医务人员家里养的宠物中更容易分离到MRSA[21].宠物与人之间不仅仅存在细菌的相互传播,也存在基因的传递,宠物的耐药性基因可能通过细菌转移到人体从而增加人患病的风险性.分离于尿路感染病犬的耐万古霉素粪肠球菌携带与人VRE 相同的转座子Tn1546,该转移元件编码万古霉素耐药基因vanA,证明了人和犬分离株可能存在着移动元件的交换[22].另一个研究较深的例子是对宠物病原菌葡萄球菌耐药机制的研究.研究人员发现部分分离株的四环素类耐药基因tet K、大环内酯类及林可酰胺类耐药基因ermC和氯霉素耐药基因catpC221是由质粒介导,这些质粒与人源葡萄球菌质粒具有很高的同源性[20,23].综合以上分析结果表明,由于抗生素被作为医疗用药和饲料添加剂的长期使用,动物体内细菌对抗生素产生耐药性,并根据使用的抗生素种类和剂量的不同,耐药也有所不同.而这些耐药微生物及其携带的耐药性基因将通过食物链或动物活动,例如直接接触或者粪便转移到人类体在动物与人体之间相互传播,从而对人体健康造成影响.

参考文献:

[1]AARESTRUP F M.Veterinary Drug Usage and Antimicrobial Resistance in Bacteria of Animal Origin[J].Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology,2005,96(4):271-281.

[2]MARTINEZ J L.Environmental pollution by antibiotics and by antibiotic resistance determinants[J].Environmental Pollution,2009,157(11):2893-2902.

[3]齐唐凯,卢洪洲.携带新德里金属β内酰胺酶基因1的细菌在全球蔓延[J].中华传染病杂志,2010,28(10):586-587.

[4]YANG Q X,ZHANG J,ZHU K F,et al.Sensitivity to veterinary antibiotics of dominant bacteria in wheat rhizosphere[J].Environmental Science & Technology,2010,33(2):85-89.

[5]ZHANG S Q,ZHANG F D,LIU X M,et al.Determination and analysis on main harmful composition in excrement of scale livestock and poultry feedlots[J].Plant Nutrition and Fertilizer Science,2005,11(6):822-829.

[6]HEUER H,SCHMITT H,ALLA K.Antibiotic resistance gene spread due to manure application on agricultural fields[J].Current Opinion in Microbiology,2011,14(3):236-243.

[7]仲晓兰.宠物食品及其行业发展状况[J].中国畜牧业,2014(23):44-45.

[8]周俊雄,马荣琴,李冬松,等.家养禽类肠道可培养细菌抗生素抗性的种类、数量和分布[J].福建农林大学学报(自然科学版),2016,45(1):56-64.

[9]TIAN B Y,FADHIL N H,POWELL J E,et al.Longterm exposure to antibiotics has caused accumulation of resistance determinants in the gut microbiota of honeybees[J].Microbiology,2012,3(6):e00377-12.

[10]LEDERBERG J,LEDERBERG E M.Replica plating and indirect selection of bacterial mutants[J].Bacteriol,1952,63(3):399-406.

[11]GOUY M,GUINDON S,GASCUEL O.SeaView version 4:a multiplatform graphical user interface for sequence alignment and phylogenetic tree building[J].Molecular Biology and Evolution,2010,27(2):221-224.

[12]SOMMER M O,DANTAS G,CHURCH G M.Functional characterization of the antibiotic resistance reservoir in the human microflora[J].Science,2009,325(5944):1128-1131.

[13]FRANK M,AARESTRUP F M.Veterinary drug usage and antimicrobial resistance in bacteria of animal origin[J].Basic & Clinial Pharmacology & Toxicology,2005,96(4):271-281.

[14]JOHNSON J K,PERENCEVICH E N,LINCALIS D P,et al.Dog Bite Tranission of AntibioticResistant Bacteria to a Human[J].Infect Control Hosp Epidemiol,2006,27(7):762-763.

[15]羅倩怡,徐燕莉,邓玉婷,等.宠物源细菌耐药性研究进展[J].中国兽医杂志,2009,45(3):57-59.

[16]RANTALA M,LAHTI E,KUHALAMPI J,et al.Antimicrobial resistance in Staphylococcus spp.,Escherichia coli and Enterococcus spp. in dogs given antibiotics for chronic dermatological disorders,compared with nontreated control dogs[J].Acta vet Scand,2004,45(1-2):37-45.

[17]杨凤霞,毛大庆,罗义,等.环境中抗生素抗性基因的水平传播扩散[J].应用生态学报,2013,24(10):2993-3002.

[18]BRENCIANI A,BACCIAGLIA A,VECCHI M,et al.Genetic Elements Carrying erm(B) in Streptococcus pyogenes and Association with tet(M) Tetracycline Resistance Gene[J].Antimicrob Agents Chemother,2007,51(4):1209-1216.

[19]LEVY S B,FITZGERALD G B,MACONE A B.Changes in intestinal flora of farm personnel after introduction of a tetracyclinesupplemented feed on a farm[J].N Engl J Med,1976,295(11):583-588.

[20]孙洋,冯书章.宠物在病原菌耐药性形成过程中的作用[J].动物医学进展,2007,28(12):106-109.

[21]DID A B,REBEKAH D J,LAUREN E H,et al.Comparison of tests to detect oxacillin resistance in Staphylococcus intermedius,Staphylococcus schleiferi,and Staphylococcus aureus isolates from canine hosts[J].Journal of Clinical Microbiology,2006,44(9):3374-3376.

[22]SIMJEE S,WHITE D G,MCDERMOTT P F,et al.Characterization of Tn1546 in vancomycinresistant Enterococcus faecium isolated from canine urinary tract infections:evidence of gene exchange between human and animal enterococci[J].Journal of Clinical Microbiology,2002,40(12):4659-4665.

[23]WERCKENTHIN C,CARDOSO M,MARTEL J L,et al. Antimicrobial resistance in staphylococci from animals with particular reference to bovine Staphylococcus aureus,porcine Staphylococcus hyicus,and canine Staphylococcus intermedius[J].Veterinary Research,2001,32(3-4):341-362.

(責任编辑:林玲娜)

此文汇总:本文论述了关于对写作宠物犬论文范文与课题研究的大学硕士、宠物狗和抗药性本科毕业论文宠物狗和抗药性论文开题报告范文和相关文献综述及职称论文参考文献资料有帮助.

宠物狗和抗药性引用文献:

[1] 宠物狗和抗药性论文写作资料范文 宠物狗和抗药性类有关硕士毕业论文范文2500字
[2] 宠物狗和常见病论文怎么写 宠物狗和常见病方面有关论文范文2500字
[3] 宠物狗和狗专升本论文范文 关于宠物狗和狗类毕业论文模板范文10000字
《宠物狗和抗药性论文写作资料范文 宠物狗和抗药性类有关硕士毕业论文范文2500字》word下载【免费】
宠物狗和抗药性相关论文范文资料